Control de la pudrición del culmo de la avena: cómo tratar la avena con la enfermedad de la pudrición del culmo

Control de la pudrición del culmo de la avena: cómo tratar la avena con la enfermedad de la pudrición del culmo

Por: Becca Badgett, coautora de Cómo cultivar un jardín de EMERGENCIA

La pudrición del culmo de la avena es una enfermedad fúngica grave que a menudo es responsable de la pérdida de cultivos. La avena con pudrición del culmo es susceptible porque se planta en primavera cuando las condiciones de humedad son óptimas y permiten que se desarrolle la enfermedad. Sin embargo, la avena sembrada en otoño en áreas más cálidas del país también es susceptible, ya que los inviernos son húmedos allí. Obtenga más información sobre la pudrición del culmo de la avena en este artículo.

¿Qué es la pudrición del culmo de avena?

Quizás se esté preguntando qué es la pudrición del culmo de avena. Para explicarlo, primero debe comprender que el culmo es el tallo de la avena, a veces llamado pie. Los tallos suelen ser huecos, lo que los hace susceptibles a la infección por esporas que provocan la pudrición.

Las plántulas jóvenes generalmente son atacadas cuando alcanzan esta etapa de crecimiento. Las plantas a veces se infestan con la podredumbre a medida que se desarrollan las espigas. Los tallos y las raíces se pudren y provocan la muerte de las plantas. Controlar la pudrición del culmo de avena en el campo en el que ocurrió es un proceso largo.

Controlar la pudrición del culmo de avena

La tierra no debe plantarse con avena durante dos años. Después de que esté bien labrada, se plantan semillas tratadas para desalentar el desarrollo de la enfermedad. Esta no es una cura total, ya que el suelo también puede verse afectado.

Las hojas rojas en las plantas a menudo son una señal de que están siendo atacadas por fusarium o necrosis de la raíz de Pythium. Estos problemas de hongos y otros a menudo están presentes en los campos de avena, atacando a las plantas cuando las condiciones son óptimas. Esto limita la producción de avena en muchos de los estados de mayor producción, incluida la avena cultivada en el huerto familiar. También disminuye la calidad de la avena que llega a cosechar.

La próxima vez que se despierte con un tazón de avena caliente en una mañana fría, considere el viaje y la dificultad a la que se han enfrentado los productores para cultivar este cultivo y entregárselo. Lo apreciarás aún más.

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Causa: Hongo ( Colletotrichum graminicola )

Síntomas: Si está presente, es probable que la antracnosis se encuentre en la parte inferior de la planta durante las dos primeras semanas de marzo. Las bases de los tallos se blanquean y luego se vuelven marrones. Se forman manchas de color marrón violáceo empapadas de agua en los nudos o cerca de ellos. Hacia la madurez de la planta de centeno, aparecen pústulas alargadas, negras, elevadas, portadoras de esporas, más pequeñas que la cabeza de un alfiler en los tallos y las vainas y láminas de las hojas o incluso en las partes florales. Ocurre pudrición de la raíz, deterioro del culmo, acame, esterilidad y maduración prematura.

Rango de host: Centeno, avena, cebada, timothy, red top, ciertos trigos, maíz, sorgo, pasto Johnson, pasto de corral de Sudán, pasto quack, cheat (ajedrez) y cebada silvestre.

Control: Rotación de cultivos sin gramíneas. Esta enfermedad está asociada con suelos bajos en fósforo y pH. La presencia de juncia de retama es un indicador de tales suelos.


Manual de enfermedades de las plantas de Texas

Triticum aestivum

Pudrición de la raíz común (tierra seca) (hongo - Bipolaris sorokiniana): El hongo infecta el entrenudo de la subcorona de las plántulas de trigo jóvenes. La pudrición de la raíz puede continuar a lo largo de la temporada y es más grave cuando se ralentiza la formación de nuevas raíces. Más adelante en la temporada, la sequía y las temperaturas cálidas favorecen la pudrición de la raíz. El tratamiento de semillas y los programas de fertilidad equilibrados pueden reducir la gravedad de la enfermedad. La rotación de cultivos también puede reducir la enfermedad y la pudrición de la raíz común está ampliamente distribuida en Texas.

Mancha foliar (hongo - Septoria tritici): Las lesiones aparecen como manchas de color verde pálido a amarillo en la hoja. A medida que se destruyen las células de la mancha, se vuelve marrón. También aparecen lesiones en la cabeza (ver ilustración). Más tarde, se forman cuerpos fructíferos de gris a negro en el punto muerto. Control con saneamiento (arado temprano) y rotación de cultivos.

Óxido del tallo (hongo - Puccinia graminis F. sp. tritici): La roya del tallo se reconoce por las pústulas irregulares y alargadas que produce en el tallo, la hoja, la vaina, el limbo, la paja, la barba y ocasionalmente en los granos jóvenes. Los fragmentos de epidermis se adhieren a los lados y extremos de las pústulas, dando una apariencia irregular. El color rojo ladrillo y las grandes pústulas alargadas lo distinguen de la roya de la hoja, que tiene pequeñas pústulas redondas y esporas de color rojo anaranjado. La roya del tallo es mucho más devastadora que la roya de las hojas en las variedades susceptibles. Las variedades de trigo blando son generalmente más susceptibles que las variedades de trigo duro rojo de invierno. La cebada, el centeno, la cebada silvestre y el pasto de cabra también son susceptibles.

Tomalo todo (hongo - Gaeumannomyces graminis var. tritici): Take-all es más obvio cerca del rumbo de las plantas que crecen en suelo húmedo. Las plantas enfermas tienen entrenudos basales de color negro brillante y pocos tallos. Las cabezas maduran prematuramente y se blanquean y se vuelven estériles. Las plantas pueden liberarse en la corona cuando se extraen del suelo. El hongo que causa la ingestión persiste en el rastrojo de trigo infectado. Los suelos alcalinos, compactados, infértiles (especialmente deficientes en nitrógeno y fósforo) y con un drenaje deficiente favorecen el uso generalizado. La enfermedad solo se ha observado en Texas bajo condiciones de riego en High Plains y Rolling Plains. La rotación puede reducir la incidencia de enfermedades en los campos donde el "take-all" ha sido un problema.

Mosaico del suelo (virus): Los síntomas del mosaico transmitido por el suelo aparecen a principios de la primavera, generalmente cuando el clima es fresco y húmedo, pero rara vez se ven en otoño o invierno. Los campos observados desde la distancia tienen manchas irregulares de plantas de color verde claro o amarillo. Los síntomas en las hojas de las plantas varían de un verde suave a un moteado y rayas amarillas, lo que le da la apariencia de mosaico. El retraso del crecimiento varía de moderado a severo y se puede lograr mediante formación de rosetas. La expresión de los síntomas favorece las temperaturas por debajo de los 68 o F. Los síntomas desaparecen gradualmente antes de la cosecha si persiste la temperatura normal. Un hongo transmitido por el suelo, Polymyxa graminis, que es un parásito de las raíces de muchas plantas herbáceas, es el vector de esta enfermedad. Las partículas de virus están dentro de las esporas del hongo o están adheridas a las esporas. El hongo invade las raíces en el otoño, cuando los suelos están frescos y húmedos, llevando consigo las partículas del virus. No existe una forma práctica de eliminar el suelo del virus del mosaico transmitido por el suelo. La rotación del trigo a otros cultivos reducirá las pérdidas.

Pudrición del pie (hongos - Fusarium avenaccum, Fusarium spp.): La pudrición del pie generalmente comienza como una invasión de las raíces de las plántulas. Las pudriciones de las patas se ven favorecidas por las temperaturas frías. El hongo es más un invasor secundario de las raíces inicialmente infectadas por el hongo común de la pudrición de la raíz. El hongo que sobrevive en los residuos de los cultivos y la rotación puede reducir la gravedad de la enfermedad.

Óxido de hoja (hongo - Puccinia recondita): La roya de la hoja se produce a ambos lados de la hoja y en la vaina de la hoja como pequeñas pústulas de color naranja rojizo. En la mayoría de los años, la roya de la hoja causa más daño en Texas que cualquier otra enfermedad del trigo. El crecimiento es rápido entre 59 y 72 ° F. Causa una reducción en el número y tamaño de los granos. La enfermedad reduce la producción de forraje en los campos donde se utiliza para el pastoreo. Las nuevas razas del hongo de la roya se originan naturalmente y desafían a las variedades de trigo. El hongo de la roya del trigo no ataca a la avena ni a la cebada.

Moho polvoriento (hongo - Erysiphe graminis F. sp. tritici): El mildiú polvoroso se encuentra generalmente solo en las hojas, pero el hongo puede atacar todas las partes aéreas de la planta. Primero se nota como pequeñas manchas de color gris claro, irregulares o circulares, en la superficie superior de una hoja. Las manchas se agrandan a medida que crece el hongo y, a menudo, pueden afectar grandes partes de la hoja. A medida que las manchas envejecen, el hongo que las cubre adquiere un aspecto floral debido a la producción de una enorme cantidad de esporas. A menudo, la superficie inferior de la hoja debajo de las manchas enfermas se vuelve amarilla y las partes más viejas de las manchas se vuelven marrones. Las hojas afectadas se deforman y arrugan y, en casos graves, se vuelven quebradizas o pueden morir prematuramente. A medida que el trigo afectado se acerca a la madurez, las estructuras frutales pequeñas y negras (que se ven como manchas negras) pueden esparcirse por todo el crecimiento del hongo en los puntos infectados. Esta enfermedad no se transmite por semillas, pero puede transmitirse por el suelo. El pastoreo cercano para mantener el crecimiento de la parte superior reducido al mínimo permitirá que la luz solar y el aire mantengan seca la corona de la planta, reduciendo así la aparición de mildiú polvoriento. Las rotaciones con plantas no hospederas también ayudarán a reducir la fase de esta enfermedad transmitida por el suelo.

Tizón o obscenidad apestosa (hongo - Tilletia foetida): Las cabezas afectadas por hongos apestosos tienen un tono azul distintivo. En el momento de la floración, las cabezas infectadas son más delgadas que las sanas y no sacan bolsas de polen. En la madurez, parecen más regordetas pero más ligeras que las cabezas normales. La bola de obscenidad consiste en una masa de polvo marrón oscuro maloliente (esporas del hongo de obscenidad apestoso). En el campo, las cabezas manchadas generalmente se mantienen más erguidas que las cabezas sanas debido a su peso más liviano. En algunas variedades, es necesario triturar los granos para determinar si las cabezas están enfermas. El olor ofensivo indica la presencia de infecciones graves en los campos o en el grano transportado. El trigo infestado suele descartarse antes del envío. Si bien las bolas de carbón pueden eliminarse limpiando y volviendo a limpiar las semillas, las esporas seguirán siendo transportadas en los granos.

Mancha bronceada (hongo - Tricostoma por Pyrenophora): Pueden aparecer manchas de bronceado en ambas superficies de las hojas. Los síntomas iniciales serán manchas de color marrón tostado y las manchas se agrandarán hasta convertirse en lesiones en forma de lente. El hongo crece como un sapropito en los residuos de los cultivos. Debido a esto, se ha observado que es más severo en el trigo sin labranza. Las prácticas culturales como el entierro profundo de la paja y la rotación ayudarán a reducir la mancha de bronceado.

Virus del mosaico de la racha del trigo: El vector de este virus es un ácaro del rizo del trigo microscópico de ocho patas, con forma de cigarro, Aceria tulipae. Esta enfermedad es más grave en el área de High Plains de Texas. Aunque la infección más grave ocurre en el otoño, las rayas y el moteado amarillentos característicos de las hojas generalmente se observan por primera vez después de un clima primaveral más cálido. A medida que las plantas se acercan a la madurez, las hojas se vuelven marrones y mueren. El WSMV provoca una raya roja en los granos de maíz. El control de esta enfermedad es posible mediante la labranza limpia alrededor de los campos, la destrucción temprana del trigo voluntario, la siembra tardía después de las heladas.

Mancha sombría (hongo - Septoria nordorum): La mancha de la gluma se produce en los ganglios, los picos y las glumas, lo que provoca zonas ennegrecidas. Los tallos están debilitados y pueden doblarse o romperse justo por encima de los ganglios. La semilla puede marchitarse, lo que reduce el rendimiento y la calidad del grano. El tratamiento de semillas, la rotación, el entierro profundo de residuos de cultivos, los fungicidas foliares y las variedades resistentes reducirán las pérdidas por enfermedades.

Tizón suelto (hongo - Ustilago tritici): El carbón suelto destruye el grano y todas las estructuras de la gluma de la espiga, dejando solo el raquis central que sale temprano. Las plantas infectadas producen esporas de carbón que son transportadas por el viento a plantas sanas en el momento de la floración. Las esporas germinan y los tubos germinales penetran en los ovarios del trigo joven, donde el hongo permanece inactivo hasta que esas semillas germinan. El uso de fungicidas para el tratamiento de semillas y semillas libres de enfermedades evitará esta enfermedad.

Pudrición de la raíz por Rhizoctonia y Mancha aguda (hongo - Rhizoctonia solani): Muchos Rhizoctonia las cepas infectan las raíces y los culmos del trigo. Las infecciones de los culmos se observan a veces en el centro norte y el este de Texas. Estos se conocen como mancha ocular aguda. La mancha ocular aguda comienza como una lesión de color gris en la vaina inferior de la hoja. Más tarde, las lesiones pueden volverse de color pajizo. Los suelos ácidos, arenosos y secos aumentan el riesgo de enfermedades, al igual que las temperaturas frescas de la primavera. El parche desnudo de trigo también es causado por una cepa particular de Rhizoctonia solani. Esta enfermedad aún no se ha identificado en Texas.

Óxido del tallo (hongo - Puccinia graminis F. sp. tritici): La roya del tallo se reconoce por las pústulas irregulares y alargadas que produce en el tallo, la hoja, la vaina, el limbo, la paja, la barba y ocasionalmente en los granos jóvenes. Los fragmentos de epidermis se adhieren a los lados y extremos de las pústulas, dando una apariencia irregular. El color rojo ladrillo y las grandes pústulas alargadas lo distinguen de la roya de la hoja, que tiene pequeñas pústulas redondas y esporas de color rojo anaranjado. La roya del tallo es mucho más devastadora que la roya de las hojas en las variedades susceptibles. Las variedades de trigo blando son generalmente más susceptibles que las variedades de trigo duro rojo de invierno. La cebada, el centeno, la cebada silvestre y el pasto de cabra también son susceptibles.

Virus del enano amarillo de la cebada: El nuevo crecimiento de las plantas de trigo infectadas en la etapa de plántula es clorótico o de color amarillento. Toda la planta quedará muy enana, se cultivará escasamente y producirá pocas cabezas con poca o ninguna semilla. Las plantas que se infectan después de la etapa de macollamiento no quedan pequeñas. El virus de la enana amarilla puede ser transportado de una planta a otra por varias especies de pulgones de los granos que hibernan en pastos perennes. No se conocen medidas de control eficaces aparte de la utilización de variedades tolerantes.


Adler A, Lew H y Edinger W 1990 Vorkommen und Toxigenität vonFusarien auf Getreide und Mais aus Österreich. Bodenkultur 41, 145-152.

Arnold-Reimer K 1994 Einfluss konservierender Bodenbearbeitung auf Pflanzenkrankheiten und Unkräuter im Getreide und Konsequenzen für einen gezielten Pflanzenschutz. Disertación der Georg-August-Universität Göttingen.

Bahle F und Leist N 1997 Einfluss konventioneller, integrierter und ökologischer Wirtschaftsweise sowie einzelner anbautechnischer Maßnahmen auf den Befall von Winterweizen mit samenbürtigen Pilzen. Ges. Pfl. 49, 220-225.

Bailey K L y Duczek L J 1996 Manejo de las enfermedades de los cereales en sistemas de labranza de conservación. Lata. J. Plant Pathol. 18, 159-167.

Beck R und Lepschy J 2000 Ergebnisse aus demFusarium-Seguimiento 1989-1999 - Einfluss der produktionstechnischen Faktoren Fruchtfolge und Bodenbearbeitung. En Risiken durch den ÄhrenparasitenFusarium graminearum - Ergebnisse eines LBP-Forschungsverbundes. Ed. Bayrische Landesanstalt für Bodenkultur und Pflanzenbau. págs. 39–47. Druckhaus Kastner, Wolznach.

Bockus W W y Shroyer J P 1998 El impacto de la labranza reducida sobre los patógenos de las plantas transmitidos por el suelo. Ana. Rev. Phytopathol. 36, 485–500.

Burgess L W 1981 Ecología general de la Fusaria. EnFusarium. Eds. P E Nelson, T A Toussoun y R J Cook. págs. 227-235. The Pennsylvania State University Press, University State y Londres.

Burgess L W, Backhouse D, Summerell B A y Swan L J 2001 Pudrición de la corona del trigo. EnFusarium. Eds. B A Summerell, J F Leslie, D Backhouse, W L Bryden y L W Burgess. págs. 271-294. APS Press, St. Paul, Minnesota.

Comisión del Codex Alimentarium 2002 Documento de debate sobre deoxinivalenol. Programa Conjunto FAO / OMS sobre Normas Alimentarias. Comité del Codex sobre Aditivos Alimentarios y Contaminantes. ftp://ftp.fao.org/codex/ccfac35/fa03_35e.pdf

Conway K E 1996 Una descripción general de la influencia de los sistemas agrícolas sostenibles en las enfermedades de las plantas. Prot. Cult. 15, 223-228.

Cook R J 1973 Influencia de los bajos potenciales hídricos de las plantas y el suelo en las enfermedades causadas por hongos transmitidos por el suelo. Fitopatología 73, 451–458.

Cook R J 1981a Relaciones del agua en la biología deFusarium. En Fusarium: enfermedades, biología y taxonomía. Eds. P E Nelson, T A Toussoun y R J Cook. págs. 236–244. The Pennsylvania State University Press, University State y Londres.

Cocinero R J 1981bFusarium enfermedades del trigo y otros granos pequeños en América del Norte. EnFusarium. Eds. P E Nelson, T A Toussoun y R J Cook. págs. 39–52. The Pennsylvania State University Press, University State y Londres.

Damm U 1998a Besiedlung von Weizenpflanzen mitFusarium- undRhizoctonia-Arten und Auftreten von Halmbasiserkrankungen bei unterschiedlicher Bewirtschaftungsintensität. Guante. una. D. Biol. Bundesanst. 357, 86–88.

Damm U 1998b Bodenmykoflora in zwei unterschiedlich bewirtschafteten Weizenbeständen mit besonderer Berücksichtigung derFusarium-Arten. Guante. una. D. Biol. Bundesanst. 357, 90–91.

Dill-Macky R y Jones R K 2000 El efecto de los residuos de cultivos anteriores y la labranza enFusarium plaga de la espiga del trigo. Plant Dis. 84, 71–76.

Domsch H K und Gams W 1970 Pilze aus Agrarböden. Gustav Fischer Verlag Stuttgart. 222 págs.

Flett B C, McLaren N W y Wehner F C 1998 Incidencia de patógenos de pudrición de la mazorca bajo prácticas alternas de labranza de maíz. Plant Dis. 82, 781–784.

Gang G, Miedaner T, Schuhmacher U, Schollenberger M y Geiger H H 1998 Producción de desoxinivalenol y nivalenol porFusarium culmorum aislamientos que difieren en agresividad hacia el centeno de invierno. Phytopathology 88, 879–884.

Garrett S D 1970 Hongos patógenos que infectan las raíces. Cambridge en la University Press, Londres 294 págs.

Gerlach W y Nirenberg H 1982 El géneroFusarium - Un atlas pictórico. Guante. BBA 209, 406 págs.

Glauninger J, Langer I, Shala-Mayrhofer V, Lanzer B, Liebhard P 2002 Untersuchungen zur Beikrautflora und zu ausgewählten Pflanzenschutzproblemen bei unterschiedlicher Bodenbearbeitung.En Auswirkungen konservierender Bodenbearbeitungsmaßnahmen auf das Auftreten von Pflanzenkrankheiten, Schädlingen und Beikräutern in österreichischen Fruchtfolgesystemen. Eds. S Steinkellner, J Glauninger, I Langer, V Shala-Mayrhofer, P Liebhard, P Schausberger, G Grabenweger, B Lanzer y E Lawson-Balagbo. págs. 86-103. Abschlußbericht Forschungsprojekt, Nr. 1181, im Auftrag des BM: LFUW.

Kandeler E y Böhm K E 1996 Dinámica temporal de biomasa microbiana, actividad xilanasa, N-mineralización y potencial nitrificación en diferentes sistemas de labranza. Apl. Soil Ecol. 4, 181-191.

Kandeler E, Tscherko D y Spiegel H 1999 Monitoreo a largo plazo de biomasa microbiana, mineralización de N y actividades enzimáticas de un Chernozem bajo diferentes tratamientos de labranza. Biol. Fertil Soils 28, 343–351.

Lew H, Adler A, Edinger W, Brodacz W, Kiendler E y Hinterholzer J 2001 Fusarien und ihre Toxine bei Mais en Österreich. Bodenkultur 52, 199-207.

Liebhard P 1993a Einfluß der Primärbodenbearbeitung auf Textur und organische Substanz von Ackerböden im oberösterreichischen Zentralraum (Teil 1). Bodenkultur 44, 199-210.

Liebhard P 1993b Einfluß der Primärbodenbearbeitung auf pH-Wert, Calcium-, Phosphat- und Kaliumgehalt von Ackerböden im oberösterreichischen Zentralraum (Teil 2). Bodenkultur 44, 303–315.

Liebhard P 1994 Einfluß der Primärbodenbearbeitung auf Lagerungsdichte, Porenvolumen und Porengrößenverteilung von Ackerböden im oberösterreichischen Zentralraum (Teil 3). Bodenkultur 45, 125-138.

Liebhard P, Eitzinger J y Klaghofer E 1994 Einfluß der Primärbodenbearbeitung auf Infiltration und Bodenwasservorrat im oberösterreichischen Zentralraum (Teil 4). Bodenkultur 45, 297–311.

Lipps P E y Deep I W 1991 Influencia de la labranza y la rotación de cultivos en el rendimiento, la pudrición del tallo y la recuperación deFusarium yTrichoderma spp. de maíz. Plant Dis. 75, 828–833.

McMullen M P y Stack R W 1983 Efectos de las técnicas y los medios de aislamiento en el aislamiento diferencial deFusarium especies. Fitopatología 73, 458–462.

Mesterházy Á, Bartók T, Mirocha C G y Komoróczy 1999 Naturaleza de la resistencia del trigo aFusarium el tizón de la cabeza y el papel del deoxinivalenol en la reproducción. Raza de plantas. 118, 97-110.

Miller J D, Culley J, Fraser K, Hubbard S y Meloche F 1998 Efecto de la práctica de labranza enFusarium tizón de la espiga del trigo. Lata. J. Plant Pathol. 20, 95-103.

Mitchell J E 1979 La dinámica del potencial de inóculo de poblaciones de patógenos de plantas transmitidos por el suelo en el ecosistema del suelo.En Patógenos vegetales transmitidos por el suelo. Eds. B Schippers y W Gams. págs. 3–20. Academic Press, Londres, Nueva York, San Francisco.

Nash S M, Christou T y Snyder W C 1961 Existencia deFusarium solani F.Phaseoli como clamidosporas en el suelo. Phytopathology 51, 308-312.

Nelson P E, Toussoun T A y Marasas W F O 1983Fusarium especies. Un manual ilustrado para identificación. The Pennsylvania State University Press, University Park y Londres. 193 págs.

Nirenberg H I 1976 Untersuchungen über die morphologische und biologische Differenzierung in derFusarium-Sektion Liseola. Guante. una. D. Biol. Bundesanst. 169, 1–117.

Obst A y Paul V H 1993 Krankheiten und Schädlinge des Getreides. Verlag Th. Mann, Gelsenkirchen-Buer. 184 p.

Parkinson D 1973 Técnicas para el estudio de hongos del suelo. Toro. Ecol. Res. Comm. (Estocolmo) 17, 29–36.

Reid L M, Zhu X y Ma B L 2001 La rotación de cultivos y los efectos del nitrógeno en la susceptibilidad del maíz a la gibberella (Fusarium graminearum) pudrición de la mazorca. Plant Soil 237, 1-14.

Rodriguez-Molina M C, Tello-Marquina J C, Torres-Vila L M y Bielza-Lino P 2000 Muestreo sistemático de suelo a microescala: heterogeneidad en poblaciones deFusarium oxysporum, F. solani, F. roseum yF. moniliforme. J. Phytopathol. 148, 609–614.

Rush C M, Mihail J D y Singleton L L 1992 Introducción.En Métodos de investigación sobre hongos fitopatógenos del suelo. Eds. L L Singleton, J D Mihail y C M Rush. págs. 3-16. APS Press, St. Paul, Minnesota.

Shala-Mayrhofer V y Glauninger J 2002 Einfluss von Bodenbearbeitungsverfahren auf den Fusariumbefall von Maiskolben. Bericht ALVA-Jahrestagung 2002, 27. - 29. Mayo de 2002 Klosterneuburg, 273–274.

Steinkellner S, Shala-Mayrhofer V, Langer I 2002 Influencia de la labranza enFusarium spp. en diferentes sistemas de rotación de cultivos. Investigación de micotoxinas. Proc. 24º Taller sobre micotoxinas en Berlín, 3-5 de junio de 2002, vol. 1, 11-14.

Stotzky G 1997 Los suelos como ambiente para la vida microbiana.En Microbiología moderna del suelo. Eds. J D van Elsas, J T Trevors y E M H Wellington. págs. 1–20. Marcel Dekker Inc. Nueva York.

Swan L J, Backhouse D y Burgess L W 2000 La humedad del suelo superficial y las prácticas de manejo del rastrojo afectan el progreso de la infección del trigo porFusarium pseudograminearum. Aust. J. Exp. Agric. 40, 693–698.

Thrane U 2001 Desarrollos en la taxonomía deFusarium especies basadas en metabolitos secundarios. EnFusarium. Eds. B A Summerell, J F Leslie, D Backhouse, W L Bryden y L W Burgess. págs. 29–49. APS Press, St. Paul, Minnesota.

Walker S L, Leath S, Hagler W M y Murphy J P 2001 Variación entre aislamientos deFusarium graminearum asociado con el tizón de la cabeza por Fusarium en Carolina del Norte. Plant Dis. 85, 404–410.

Weber R, Hrynczuk B, Runowska-Hrynzuk B y Kita W 2001 Influencia del modo de labranza en las enfermedades de la base del culmo de algunas variedades de trigo de invierno, avena y trigo de primavera. J. Phytopathol. 149, 185-188.

Weingärtner J, Krska R, Praznik W, Grasserbauer M y Lew H. 1997 Uso de columnas de limpieza multifuncionales Mycosep para la determinación de tricotecenos en trigo mediante cromatografía de gases de captura de electrones. Fresenius J. Anal. Chem. 357, 1206–1210.

Windels C E 1992Fusarium.En Métodos de investigación sobre hongos fitopatógenos del suelo. Eds. L L Singleton, L D Mihail y C M Rush. págs. 115-128. Prensa de APS, St. Paul, Minnesota.

Wildermuth G B, Thomas G A, Radford B J, McNamara R B y Kelly A 1997 Podredumbre de la corona y podredumbre de la raíz común en trigo cultivado bajo diferentes tratamientos de labranza y rastrojo en el sur de Queensland, Australia. Hasta el suelo. Res. 44, 211-224.

Yi C, Kaul H P, Kübler E, Schwadorf K y Aufhammer W 2001 Tizón de la cabeza (Fusarium graminearum) y la concentración de desoxinivalenol en el trigo de invierno afectada por la pre-cosecha, la labranza del suelo y la fertilización con nitrógeno. J. Plant Dis. Prot. 108, 217-230.

Yi C, Kaul H P, Kübler E y Aufhammer W 2002 Poblaciones deFusarium graminearum sobre los residuos de cultivos afectados por la profundidad de incorporación, la aplicación de nitrógeno y fungicidas. J. Plant Dis. Prot. 109, 252-263.

ZAMG (Instituto Central de Meteorología y Geodinámica, Viena) 2003 http://www.zamg.ac.at


Trigo (Triticum aestivum) -Tizón de la cabeza por fusarium (sarna)

Causa Varias especies de Fusarium pueden causar sarna, entre ellas: F. graminearum, F. avenaceum, F. culmorum y Microdochium nivale (anteriormente Fusarium nivale). Estas especies de hongos residen fácilmente en el suelo y pueden crecer allí en una amplia gama de condiciones. Operan como patógenos de plantas y pueden colonizar residuos de plantas y vivir como saprófitos (sin un huésped vivo). También pueden infectar raíces de numerosas especies de plantas sin causar síntomas en la superficie, lo que significa que su población puede aumentar en un campo y es posible que nunca se note. En granos pequeños, estos hongos también pueden causar pudrición de semillas, tizón de plántulas y manchas en las hojas, así como pudrición de raíces y patas. Las esporas producidas en los residuos de plantas en la superficie del suelo pueden viajar con el viento hasta la espiga del trigo y posteriormente invadir partes de ella. La lluvia, el riego o el rocío intenso promueven la alta humedad necesaria para la germinación y penetración de las esporas. Cuanto más tiempo permanezcan húmedas las plantas de trigo durante la floración y el desarrollo temprano de la semilla, mayor será la posibilidad de infección y propagación en la planta. Las condiciones más favorables para la infección son períodos prolongados (36 a 72 horas) de alta humedad. Generalmente, el trigo es más susceptible en la etapa de floración. El grano infectado con sarna puede contener las micotoxinas conocidas como vomitoxina y zearalenona. La vomitoxina (deoxinivalenol) puede provocar vómitos y rechazo de la alimentación en los cerdos. La zearalenona es una micotoxina estrogénica y puede causar infertilidad en animales domésticos. La costra en el grano no significa que tenga micotoxinas; sin embargo, el grano con costra debe analizarse en busca de vomitoxina y zearalenona. La costra fue grave en el este y centro sur de Idaho y Washington en 1982 y 1984.

Síntomas Se desarrollan manchas de color marrón oscuro en las glumas poco después de que se infecta la cabeza en desarrollo. Las espiguillas enteras se arruinan y la infección puede extenderse a otras espiguillas. En climas cálidos y húmedos, el moho rosado será visible. Una masa de esporas de color melocotón puede estar en la base de las glumas infectadas. El hongo puede extenderse por toda la espiga y hacia el culmo, provocando la muerte de la cabeza, lo que provoca un blanqueamiento prematuro. Solo una parte de la cabeza puede blanquearse prematuramente. Los floretes infectados que no mueren producen granos mal llenos.

Control cultural Las condiciones ambientales juegan un papel clave en el desarrollo de la costra, pero ciertas prácticas culturales reducen la supervivencia de patógenos, disminuyendo el riesgo de infección por costras.

  • Rote los campos de cereales, semillas de pasto o maíz durante al menos un año. Evite las rotaciones de cultivos en las que el trigo sigue a otras plantas susceptibles. Especialmente evite plantar trigo después de maíz o sorgo.
  • Si está regando, administre la aplicación de agua para minimizar los períodos de alta humedad.
  • La labranza para enterrar los residuos de cultivos infestados ayuda a reducir el riesgo. En prácticas de labranza mínima o nula, esparza y ​​distribuya la paja y otros residuos para acelerar la descomposición, reduciendo las poblaciones de patógenos.
  • Al aumentar el flujo de aire de la cosechadora, se eliminan muchos granos costrosos, que están arrugados y ligeros.

Control químico Los tratamientos de semillas que contienen Dividend, Mertect o Thiram reducen la contaminación por Fusarium en las semillas utilizadas para plantar un cultivo posterior, pero el tratamiento no tiene ningún efecto sobre el tizón de la cabeza.

  • Prosaro de 6.5 a 8.2 fl oz / A al comienzo de la floración (etapa de crecimiento de Feekes 10.5). No aplicar dentro de los 30 días posteriores a la cosecha. Reingreso a las 12 horas.
  • Otras formulaciones del Grupo 3 de propiconazol (Tilt), tebuconazol (Orius 3.6 F) o protioconazol Proline 480 SC) están etiquetadas solo para la supresión del tizón de la espiga del trigo, no para el control.

Referencias Bai, G. y Shaner, G. 1994. Sarna de trigo: perspectiva de control. Enfermedad de las plantas 78: 760-765.


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